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    Comment mesurer la croissance bactérienne dans des boîtes de Pétri

    Les bactéries sont cultivées dans des boîtes de Pétri sur un milieu solide appelé gélose bactérienne, où se forment des colonies circulaires surélevées. Contrairement à une cellule bactérienne individuelle, une colonie est un groupe de bactéries suffisamment grand pour être visible à l'œil nu. La croissance bactérienne peut être mesurée par une simple observation du nombre de colonies présentes; cependant, des méthodes plus quantitatives comprennent l'utilisation d'une chambre de comptage, ou plus souvent, des comptes de plaques viables. Ce dernier est utilisé le plus fréquemment car il fournit également des informations qualitatives telles que l'effet des conditions de croissance variables. Puisqu'il peut y avoir des milliards de bactéries dans une boîte de Pétri, la mesure nécessite d'abord de diluer l'échantillon afin qu'il soit possible de compter le nombre de colonies.

      Dans une éprouvette, ajouter 10 microlitres de départ culture bactérienne à 90 microlitres de milieu de dilution. Fermer hermétiquement le couvercle du tube et vortexer doucement pour obtenir un mélange homogène. Maintenant, l'échantillon est un dixième de sa concentration d'origine.

      Transférer 10 microlitres de ce nouvel échantillon dans un nouveau tube à essai contenant 90 microlitres de milieu de dilution, mélanger à nouveau. Une fois de plus, le résultat sera l'échantillon encore dilué - il sera maintenant le centième de sa concentration d'origine. Répétez cette opération plusieurs fois, jusqu'à ce que l'échantillon d'origine ait été dilué entre 10 4 et 10 10 fois. Assurez-vous que chaque tube est étiqueté avec la bonne dilution, par exemple 10 -1, 10 -2 et ainsi de suite.

      Distribuez 10 microlitres de la dernière dilution effectuée sur la plaque d'agar. À l'aide du bord d'étalement, répartissez la solution bactérienne sur toute la surface de la plaque de gélose. Répétez cette opération pour deux autres assiettes. Il est également courant d'effectuer ces étapes avec d'autres niveaux de dilution pour comparaison. Assurez-vous d'étiqueter le fond des assiettes. Replacer les couvercles sur chaque plaque et laisser les plaques de gélose sécher pendant plusieurs minutes soit sur un banc de laboratoire sous une flamme, soit dans un incubateur. Placer les plaques dans l'incubateur qui doit être réglé à la température appropriée pour la souche de bactéries. Laisser pousser 12 à 16 heures.

      Les colonies doivent être visibles après 16 heures; cependant, certaines modifications génétiques peuvent nécessiter plus de temps (par exemple, le développement de la couleur). Lorsque les colonies sont observables, sortez les plaques et trouvez celles qui ont entre 30 et 300 colonies. À l'aide d'un marqueur permanent, placez un point au fond de la boîte de Pétri - le côté avec la gélose, pas le couvercle - partout où une colonie est visible à travers la gélose. Comptez chaque point marqueur. Répétez l'opération pour chaque boîte.

      Pour mesurer la quantité de bactéries dans la culture de départ pour cette expérience, la dilution doit être inversée dans les calculs, à deux endroits. Tout d'abord, lorsque vous avez pris un microlitre du tube à essai pour mettre dans la boîte de Pétri, vous avez pris un dixième de l'échantillon dilué, vous devez donc tout multiplier par 10 pour inverser cela. De plus, si le facteur de dilution dans le tube à essai était, par exemple, 10 -7, alors le nombre de colonies doit être multiplié par 10 7 afin d'inverser l'effet de dilution. Retirez simplement le signe négatif de l'exposant dans les calculs. Utilisez la formule:

      [Nombre de colonies comptées] × 10 × [combien de fois l'échantillon doit être multiplié pour atteindre la concentration d'origine: par exemple, 10 5] \u003d Nombre d'unités formant colonie (CFU) par millilitre de culture de départ. Il s'agit de la croissance bactérienne dans vos boîtes de Pétri.


      Conseils

    1. Assurez-vous de stériliser le diffuseur en verre en plongeant le bord de propagation dans de l'éthanol à 70 pour cent et en insérant dans une flamme de brûleur Bunsen. Laissez l'éthanol prendre feu et brûlez lentement l'alcool, ce qui tuera toute contamination bactérienne. Touchez-la délicatement à la partie sèche (c'est-à-dire sans bactérie) de la gélose pour la refroidir - la gélose ne doit pas fondre au contact.




      Avertissements

    2. Traitez toutes les bactéries comme si elles étaient potentiellement pathogènes et utilisez les procédures de sécurité de laboratoire appropriées.



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